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小 🐼 鼠神经干细胞原 🦢 代提取(小鼠神经干细胞的分离及培养实验)

  • 作者: 张清然
  • 来源: 投稿
  • 2025-09-25


1、小鼠神经干细胞原代 🌲 提取 🐕

小鼠神经干细 🦊 胞原代提取

材料

🐎 胎小 🐡 鼠(E12.5E14.5)

🦄 冻液(Hank's 平衡 🦄 盐溶液、10% DMSO、10% FBS)

去离子 🌾 🐳

70% 乙 🐈 🌼

无菌手术器械手术(剪刀手术 🌴 、镊子)

神经干细胞 🌿 培养基(DMEM/F12、B27 补充剂 🐝 、EGF、FGF2)

步骤

1. 胚胎获 🕷 取:处死怀孕小鼠,解,剖子宫取出胎儿 🐈 收集 E12.5E14.5 的胚胎。

2. 无菌处理:将胚胎浸泡在 70% 乙 🐱 醇中 1 分钟 💮 ,然后用无菌去 🦢 离子水冲洗三次。

3. 组织解剖:在无菌操作条件下,使,用手术剪刀和镊子切除胚胎头颅 🐒 移除脑组织。

4. 神经干细胞分离:将脑组织放入含 100 U/mL papain 和 25 mg/mL DNase I 的神经干细 🐦 胞培养基中,37°C 孵育分 45 钟。

5. 机械解离:用钝头 🦉 移液管吹打脑组织,使组织解离成单细胞。

6. 过滤:将细胞悬浮液通过细胞滤 40 μm 网过滤,去除残 🌹 留组织碎片。

7. 离 🦉 🦈 :将 🍀 过滤后的细胞悬浮液以离心 1000 rpm 分 5 钟。

8. 细胞重悬:用神经干 🌸 细胞培养基重悬细胞沉淀,调整细胞密 🦄 度为 510 x 10^5 个细胞/mL。

9. 培养:将细胞接种到涂有 polyLornithine 和层粘连蛋白的培 🐋 养皿中,37°C、5% CO2 条件下培养 🦍

注意事项

无菌操作至关重 💐 要,以防止培养物 🦅 污染。

🐋 化酶消化时间以最大程度地分离神经干细胞,同时最大程度地减少细胞损 🌾

定期更换培养 🦊 基以维持无菌条件并 🦍 为细胞提供营养。

使用生长因子(如 🌸 EGF 和 FGF2)刺激神 🕸 经干细胞的分化。

2、小鼠神经干细胞 🦅 🐝 分离及培养实验

🐞 💐 神经干细胞的分离及培养 🌵 实验

🦅 料和试 🦈

实验 🌼 动物:C57BL/6小 🐦 🌴 ,68周龄

培养基培养基 🐳 :Neurobasal

生长 🦈 因子:EGF、bFGF

培养板:聚 🐶 赖氨 🦈 酸涂 🕷 层的6孔板孔板、12或孔板96

分离液 🐺 :HBSS溶液(含EDTA和海马蛋白 🦟 🦍

血清 🐈 :小牛血清(NBS)

抗生素:青霉素/链霉 🌺

其他:解剖工 🐺 具、离、心机显微镜

实验步骤

🦢 、小鼠脑组 🦅 织分离

1. 处 🌵 死小鼠并取出大 🕷 🐼

2. 移除大脑膜和 🦅 脑小 🌸 脑。

3. 将分离的脑 🐶 组织置于HBSS溶液中 🌷

二、分 🕷 离神经 🌲 🌾 细胞

1. 将脑组 🐅 🌷 切成小块

2. 用离心 🪴 机离心脑 🐘 组织块,收集上清液。

3. 加入生 🕸 长因子EGF和 🍁 bFGF至上清液中 🐡

🐒 、培养神经干细胞

1. 将上清液 🌳 🕷 入涂有聚赖氨酸的培养板中。

2. 加入血清 🐺 和抗生素。

3. 在37°C、5% CO2培 🐵 养箱中培 🌴 养。

🐝 、换液 🕸 🍀 传代

1. 每 🌳 23天更换一次培养 🦄 💮

2. 当细胞生长至6080%汇合时传代 🪴

3. 去除培养基,用PBS冲洗细 🐈 🦟

4. 加 🦋 🕸 胰蛋白酶,消化细胞。

5. 离心收集细胞,并 🌸 重新接种至 🦆 新的培养板中。

细胞表征

形态观察:神经干细胞 🦍 通常呈多极性 🦍 、星形形 🐕 态。

免疫细 🐋 胞化学:可以使用Nestin、GFAP等神经干细胞标记 🐶 物进行免疫细胞化学染色。

注意事项

使用无 🐒 菌技术进行 🕊 🦢 有操作。

使用新鲜的小鼠脑组 🌳 织。

培养基 🐝 应新鲜配 🐧 制。

避免 🐅 🐧 度消化细胞。

🌳 期监测细胞生长情况 🍀

3、小鼠 🐛 神经干细胞原代 🐈 提取技术

小鼠神经 🌻 干细胞 🐶 原代提取技术

材料

🐎 🐧 (P0P5)

🐯 PBS

🌴 🦍 白酶 🕊 (0.25%)

DNase I

神经基 🕷 质培 🐼 养基

组织 🐦 培养皿/板

无血清神经 🌵 基质培养基

步骤

1. 准备 🐯 小鼠

人道处死 🐼 🐕 鼠,收集大脑。

在冷 PBS 中 🌷 浸泡大脑 🦋 5 分钟。

2. 去除脑 🐠

用镊子小心地从大 🦆 脑表面剥离脑膜。

3. 切碎 🌲 🌷

将大脑 🍀 转移到组织培养皿中,使用手术刀或玻璃移液管 🌴 切碎成小块。

4. 消 🐱 🌵

加入含胰蛋 🐳 白酶和 DNase I 的冷 PBS(每克脑组 🐘 织 23 ml)。

在 37°C 的 🐦 振荡器中孵育 1530 分钟 🐺 ,直至组织 🌹 碎块解离。

5. 终止消 🦁

加入等体积的无血清神经基质培养基,终止消化 🦆

6. 离心 🐺

将细胞悬浮液 🐶 在 300 x g 下离心 10 分钟。

去除上清液,小心地重悬细胞于新 🦆 🌼 的神经基质培养基中。

7. 过滤 🌺

通过 🐬 70 μm 细胞 🕸 筛过滤细胞悬浮液,去除未解 🐘 离的组织碎块。

8. 计数 🐼 和接 🌷

计数细胞,并将细胞接种到聚 🌻 赖氨酸包被的组织培养皿/板中。

培养于 🐎 37°C、5% CO2 的 🌻 培养 🐼 箱中。

提示

使用新鲜、年轻的小鼠样品以 🐝 确保最佳的细胞质量。

🐦 整个过程中保持无菌 🐼 🐧 件。

如果消化时间过长,可 🐼 能会损 🍀 坏细胞。

优化胰蛋白酶和 🌼 DNase I 的浓度 🌷 以获得最佳 🌿 的细胞分离。

培养基 🐱 的成分可能会根据具 🦟 🐴 的研究目的而有所不同。

4、小鼠神经元原代细胞 🦢 🐎

小鼠神经元原 🐺 代细胞培养

材料
小鼠脑

Hank's 缓 🍁 冲液 (HBSS,无钙无镁)

胰蛋 🐘 白酶溶液胰蛋白 🐝 酶 (0.25% ,2 mM EDTA,HBSS)

🌲 经元生长培养基 (NBG)

多聚L赖氨 🍀 酸 (PLL)

培养皿或培养板 🕊

移液枪

细胞计 🪴 数器

显微镜
步骤

1. 组 🐅 织解剖

在无菌条件下,解剖 17 天大 🐴 的小鼠 🦆 脑。

去除脑膜并切取海马体或感兴趣 🐱 🌴 区域。

2. 酶 🦍 消化

将海马体组织切成小块,放入胰蛋 🌲 白酶溶液中。

置于 37°C 孵育 1530 分钟 🦁 ,每分钟 5 吹打一 🌷 次细胞。

🌷 心 5 分 🐡 🦟 ,4°C,1000 g。

3. 细胞 🕷 悬浮 🐅

去除 🕷 上清液 🌿 ,用 🌵 NBG 重悬细胞。

用细胞计数器 🐵 计数细胞 🐬 数量。

4. 细 🌺 胞接 🐺 🌼

🦋 细胞稀释至所需的浓度(通常为 🐟 510 x 10^5 个细胞/ml)。

将 PLL 溶液涂布于培养皿或培养板 🐦 中,以促进细胞粘附。

按所需体积将细胞悬浮液 🐴 接种到 🌾 🍀 养皿或培养板中。

5. 培 🦍

🐶 🌾 养物置 🌿 于 37°C,5% CO2 的培养箱中。

每 23 天更 🐱 换培养基。

6. 鉴定和 🐝 🌺

使用免疫细胞化 🌸 学或荧光 🦁 染色对神经元进行鉴定。

使用显 🐞 微镜观察细胞形态、突触 🐝 形成和生长 🐅

进行电生 🐬 🕊 实验以评估 🐬 功能。

提示

使用 🐅 高质量的酶并 🐼 严格遵循孵 🐈 育时间。

在接种后 24 小时内去除未粘附的 🐅 细胞。

定期检查培 🐝 养物是否存在 🐒 🐛 染。

不同 🐶 来源和年龄的小 🐼 鼠神经元原代细胞的培养条件可能有所不同。优。化条件对于获得健康和活跃的神经元培养至关 🪴 重要

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