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暨大干细胞操作流程(细胞免 🐦 疫荧光操作流程)

  • 作者: 陈茁沅
  • 来源: 投稿
  • 2025-08-18


1、暨大干细胞操作 🐕 流程

暨南大学干细胞操作流程 🌷

一、实 🐟 验准备 🐬

1. 实验人员培训:所有参与干细胞操作的人员须接受适 🌻 当的 🕊 培训和认证。

2. 实验设备和材料:准备必 🌺 要的设备(如超净工作台、二氧化碳培养箱材料如)、无(血、清培养)基生长因子和试剂。

3. 清洁和消毒清洁和消毒:工作区 🐘 域和所有使用的设备。

🐶 、干 🐞 细胞 🌾 培养

1. 从无 🐱 菌来源获取干细胞从无菌来源:如 🌿 (脐带血、骨髓)提取干细胞。

2. 接种干细胞培养基:将干细胞悬 🐺 液接种到含有适当生 🦢 长因子的无血清培养基中。

3. 培养 🌳 🍁 件:将细胞放置在 37°C、5% 二氧化碳 🐈 的培养箱中培养。

4. 监测和维持培养:定 🕷 期监测细胞生长,更换培养基并根据需要补 🐬 🐝 生长因子。

三、干细胞 🌼 传代

1. 传代时间:当细胞达 🐕 到 8090% 的汇合 🌿 度时,进行 🐛 传代。

2. 酶解 🐡 :用胰蛋白酶或 TrypLE 等酶解液处理细胞以将其从培养皿中剥离。

3. 计数 🐱 和重悬 🌳 计数:细胞并重悬在新鲜培养基 🌷 中。

4. 重新接种 🦊 :将细胞 🐶 重新接种到新的培养皿中继续培养。

四、干 🦄 🐝 胞分 💐

1. 分化诱导:添加适当的诱导因子或培养 🌼 条件以诱导干细胞 🐬 分化为所需的谱系。

2. 分化监测:通过免疫 🦅 表型 🌷 分析 🌺 、RTPCR 或其他方法监测分化过程。

3. 纯化 🐧 分化细胞:使用细胞分选技术或其 🌷 他方法纯化 🐯 所分化的细胞。

五、干细胞冷 🌸 冻保存 🐱

1. 细胞冻 🌿 存:将细胞悬液在含 💐 有 DMSO 或其他冷冻保护剂的冷 🍀 冻液中冷冻。

2. 液氮储存:将冻存的细胞保存 🦢 在液氮罐中。

3. 复苏:在需要时,将 🐛 冻存细 🐋 胞复苏。

🐞 、质量 🐴 控制

1. 细胞鉴定定:期进 🌼 行细胞鉴定以验证细胞特 🌲 性,如免疫表型、分化能力 🪴 等。

2. 微生 🐧 物监测:对培养物进行定期微生物监测以确保无菌性。

3. 记录 🌼 保存记录:所有实验步骤、观察结果和质量控制数据。

注意:

始终遵循良好 🌺 的实验室规范 (GLP)。

使用个人防护装 🐋 🐠 (如 🐬 手套、口、罩护目镜)。

按照机 🐬 构安全协议处理危险物质。

在进 🐶 行任何操作之前,请咨询有经验 🐯 的研究人 🌲 员。

2、细胞免 🦁 疫荧光操作流程

细胞免 🌼 疫荧光操作流程

材料:

🐶 胞样本 🐦

一抗和二抗 🌷

阻断液
封闭液

免疫荧光染 🐳 色剂(例如 DAPI)

载玻片
步骤:

1. 细 🦋 胞准 🐠 🦢

将细胞接种在载玻片上,并培养至所需密度 🌳

移除培养基并用 🌿 PBS 洗涤细胞。

2. 固 🐳 🦢

🦢 4% 多聚甲醛固定细胞 15 分钟。

用 PBS 洗 🐧 🐋 细胞 🐴

3. 透 🐱 🐦

用 0.1% Triton X100 透化 🦈 细胞 10 分 🍀 钟。

用 PBS 洗 🌵 🐝 细胞 🪴

4. 阻 🐛 🦍

用 5% 牛血 🦈 清白蛋白或其 💐 他阻断剂阻 🐋 断细胞 1 小时。

🐘 PBS 洗涤 🦁 细胞。

5. 一 🐋 抗孵 🐋

🐺 🐦 释的 🐡 一抗孵育细胞过夜(4°C)。

🐛 PBS 洗 🌾 涤细胞 🌷

6. 二抗孵育

用稀释的二抗孵 🌵 育细胞 1 小时 🐎 (室温 🐼 )。

🐅 PBS 洗涤 🌲 细胞 🐞

7. 染 🐵

🦅 DAPI 或其 🍀 🦁 核染料染色细胞 10 分钟。

用 PBS 洗 🐵 涤细胞。

8. 封 🕸 🐟

用封 🐱 闭液封闭细胞,以减少非特异性结合。

用 PBS 洗涤 🐦 🐡 胞。

9. 安 🌾 🐴

将细胞用甘 🦈 油或其他安装介质 🌺 覆盖。

用载玻片覆盖细胞 🌻

显微镜观 🐒

使用 💮 荧光显 🌲 微镜观察细胞。

使用适当的 🌷 滤光片激 🐶 发和检测荧光。

🐵 意事项:

使用高 🐧 🌺 度的试剂。

在操 🦊 🦁 过程 🐈 中保持无菌环境。

优化抗体稀释度和孵育时 🌼 间以获得最佳信号强度和特异性。

保护细胞 🐅 免受光照,以防 🍀 止荧光褪色。

3、液基细胞检查操 🐝 作流程

🦆 基细胞检查操作流程

1. 标 🐅 本采集 🐬

使用指定妇科检查刷收 🕷 集宫颈脱落细胞。

将刷子放入装有保 💮 存液 🐼 的容器中,并旋转10次以上。

取出 🦋 刷子,冲 🐒 ,洗刷头丢 🐕 弃刷子。

2. 标 🌴 本制片

将保存液倒入标本制 🌺 的试管中。

使用移液 🌷 管吸取一定量的细胞悬液。

将细胞 🍁 悬液滴加 🐘 在载玻片上。

使用刮片 🍁 器将细 🌷 胞均 🦈 匀分散在载玻片上。

将载 🌵 玻片 🦊 风干 🌹

3. 标本 💐 🌾

使用帕氏染色法对标本进行染色 🌼

使用 🐧 自动染 🌳 色仪或手工染色。

染色 🌷 后观 🌸 察标本。

4. 标 🐟 🐒 评估 🐯

使 💐 用显 🐕 微镜观察 🌹 标本。

评估 🐕 细胞形态、核形态和细胞核 🐋 质比例。

根据Bethesda系 🌴 统对标本进行分 🦈 类。

5. 标本报 💮 🦋

撰写 🦁 🕊 基细胞检查报 🐅 告。

报告包 🌾 括标本分类、诊断结果和任何其他相关信息。

将报 💮 告发送给患者的医疗保健提 🐦 供者。

🐠 意事项:

确保使 🐬 用已注册和批准的液基细胞检查套件。

严格遵守 🦉 制片和染色协议 🕊

由合 🐕 格的病理学家 🌵 评估标 🌳 本。

🦍 🦁 应定期进行 🦢 液基细胞检查,以筛查宫颈癌前病变和宫颈癌。

4、细胞换 🌵 液的操作流程 🦟

🐒 胞换液的 🐛 的操 🐶 作流程

材料:
培养基

无血 🕸 清培养基

培养皿 🐡 或瓶

吸管
移液器
无菌瓶
培养箱

操作流程 🕊

1. 准备无菌瓶:在无菌工作 🐎 台中,用无,血清培养基将一个无菌瓶润湿然后倒掉多余的培养基。

2. 移除旧培养基:使用吸管小心地从培养皿或 🐬 瓶中吸出旧培养基。尽量吸干 🌾 净旧培养基,但。不要吸起细 🐎

3. 加入新鲜培养基:使用移液器将新鲜培养基缓慢地加入培养皿或瓶中加入。的培养 🌾 基。量应与之前的旧培养基量大致相同

4. 轻轻摇动轻轻摇动:培养皿或瓶,以 🕊 均匀混合新鲜培养基和 🦈 剩余的旧 🕸 培养基。

5. 转移细胞:使用移液器小心地将培养 🐧 皿或 🦁 瓶中的细胞转移到无菌瓶中。确。保将所 🐎 有细胞都转移过去

6. 重新润湿:用无血清培养基再次润湿之前的培养 🐘 皿或瓶,然后倒掉多余的培养基。

7. 孵育:将无菌瓶转移到培养箱中孵育孵育 🐬 。条 🐧 。件与之前的培养条件相同

🌷 🌸 🌻 项:

💐 整个过程中保持无菌操作。

用无血清培养基润湿培养皿或瓶可以去除 🌸 残留的培养基 🕷 ,从而防止细 🐋 胞附着。

不要 🐎 过度吸 🌲 取培养基,以免吸起细胞。

轻轻摇动培养皿或瓶 🐯 ,以避免 🐋 损坏 🐴 细胞。

孵育细胞 🐕 的时间根据细胞类型 🐱 和实验目的而定。

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